BTX ECM830 Quadratwelle Elektro-Piercing-Live-Importer

Der chinesische Händler von BTX-Produkten ist spezialisiert auf die Herstellung von Klassikern. Der berühmte amerikanische BTX ist ein professioneller Hersteller von Zellfusion- und Elektroperforationsgeräten. Seit 1983 nutzen anspruchsvolle Wissenschaftler BTX-Produkte als Instrumente für Anwendungsbereiche wie Elektrofusion, Genmodifizierung und andere. Neben den weltweit führenden Elektrofusions- und genetisch veränderten Systemen umfasst das BTX-Produkt bis zu 25 zugehörige Zubehör, darunter eine Vielzahl von spezialisierten Elektroden, die den Benutzern eine größere Auswahl bieten. BTX baut auch eine technische Datenbank auf, die über 5000 Referenzkataloge und über 600 Protokolle zur Forschung bietet.

Anwendungsbeispiele
• Transfektion von Tierzellen (System: ECM630/830)
Die Transfektion von Eukariozyten kann durch eine Vielzahl von Methoden erreicht werden, wie z. B. Calciumphosphatfällung, Liposomtransfektion, Virenmethode und Elektroperforation. Elektro-Piercing hat offiziell eine gute Wirkung auf Zellen mit schlechten herkömmlichen Transfektionsmethoden und wurde daher als Zui-optimales molekulares Übertragungssystem gewählt. Die Vorteile der Elektroperforation sind Wiederholbarkeit, höhere Effizienz, große Probenbehandlung, Nichttoxizität und einfache Verwendung (keine Inkubationszeit erforderlich).
Lofin et al. (1999) haben NIH/3T3-Zellen durch eine Elektroperforation mit mRNA durchgeführt, um die Regulierung und Kontrolle der mRNA-Genexpression während des Zellzyklus und der Zelldifferenzierung zu untersuchen. Bodwell et al. (1999) erhielten ein höheres Ausdrucksniveau nach der Elektroperforation von COS-7-Zellen mit längeren Pulszeiten. Warner et al. (1997) haben Lymphozyten erfolgreich mit der Elektropiercing-Methode umgewandelt. Incyte Genomics hat erfolgreich ES-Zellen für die Produktion von genetisch veränderten Mäusen mit dem BTX-Elektroperforator transfiziert. Das BTX ECM399-Gerät, die Elektroperforationsbecher und eine Vielzahl spezieller Elektroden werden für die Transfektion von Tierzellen eingesetzt.

• Protein-Elektrointegration/Elektroinsertion (System: ECM630/830)
Die Einführung von Proteinen in die Zelle und die Einführung von Proteinen in die Zellmembran können auch durch Elektroperforation erfolgen. Nicht nur Peptidensegmente, sondern auch verschiedene Proteine, einschließlich Antikörper, können importiert werden. Ushio-Fukai et al. (1998) quantifizierten die Elektroperforation von exotischen Proteinen in Säugetierzellen. Für diese Anwendungen können mehrere BTX-Elektroden verwendet werden.

• Transformation von Pflanzenzellen (System: ECM630/830)
Die Elektroperforation von Pflanzenprotogen (Mais, Tabak usw.) und ganzen Pflanzen kann verwendet werden, um genetisch veränderte Pflanzen zu erzeugen, die für die Landwirtschaft/Gartenbau nützlich sind. Ein Hauptziel der Transformation von Pflanzenzellen ist die stabile Transformation von Pflanzenzellen zur Erzeugung von Pflanzen mit ausgezeichneter Qualität und erhöhtem Ertrag. Lin et al. (1997) optimierten die elektroporierenden Bedingungen für die GUS-Expression in einer Vielzahl von Pflanzen und zeigten, dass sowohl ganze Pflanzenzellen als auch Protostoffe effektiv umgewandelt werden können. Diaz et al. (1994) führten ähnliche Optimierungsversuche an der Nativität der Blätter und Wurzeln von Weizen und Hafer durch, die die Wirksamkeit von Elektroperforationen für die Pflanzenarbeit belegten. Die Autoren verglichen auch die Unterschiede zwischen Elektroperforation und PEG und fanden heraus, dass Elektroperforation effektiver, wiederholbarer und wirtschaftlicher ist. BTX ist der Mensch der Welt, der mit speziellen Elektroden im Körper transfiziert wird. Für diese Anwendungen können mehrere BTX-Elektroden verwendet werden, wie z. B. 2-Pin-Arrays, Cursor-Elektroden und Tweezertrodes.
• Transinfektion von Adhesive Cells----ACT (System: ECM630/830)
Neben der Elektroperforation von Suspensionszellen, die in normalen Probenbechern gelagert sind, können in situ auch Klebstoffzellen auf mehreren Platten elektroperforiert werden. Dies verhindert die Verdauung von Zellen mit Pansenzymen und hilft dabei, die Aktivität der Zellen und die Anzahl der Zellen aufrechtzuerhalten. Lewis et al. (1999) verwendeten Petrischalelektroden zur Transfektion von Genen in menschliche und venerische Endotelzellen. Paptis et al. (1998) durchführten in situ elektro-Piercing-Studien zur Signaltransferenz auf NIH/3T3-Zellen, die lange in leitenden Folien waren. Teruel et al. (1999) übertragen auch die Hippocampus-Nervenzellen in DNA, RNA und eine Vielzahl von Makromolekülen. BTX liefert PP35-2, 366, 747, 840 und Epizap Elektrodensysteme für die Transfektion von Adhesive Cells (ACT). Achten Sie auf neue Produkte, die in Kürze für diese Zwecke entwickelt werden

• Hochdurchsatzprüfung --- HTS (System: ECM630/830)
Hochdurchsatz-Screening und der Aufbau von cDNA-Bibliotheken erfordern die Fähigkeit, mehrere Proben gleichzeitig zu verarbeiten. Die Verwendung eines herkömmlichen Probenbechers ist kostspielig und zeitlich begrenzt. Die Elektroden, die in 96-Loch-Platten verwendet werden, sind jedoch für diese Art von Anwendungen sehr nützlich. Hoffma-Tsay et al. (1994) untersuchten acht Chemikalien in Pflanzenfusionsexperimenten mit 96-Loch-Koaxialelektroden. Peterfy et al. (1995) verglichen verschiedene Arten von porösen Elektroden, die DNA in COS-7-Zellen übertragen. Marrero et al. (1997) verwendet poröse Elektroden, um Antikörper Elektrizität in die Blutgefäße glatten Muskelzellen zu bringen, um die Zellwerte zu induzieren. BTX bietet derzeit 747 und 840 für diesen Zweck an und entwickelt ständig neue Produkte.

In vivo Genimport (IVGD) (System: ECM830)
In der nicht-viralen Technik der Gentransfer im Körper ist die direkte Injektion von Plasmid-DNA in den Muskel einfach, billig und sicher. Aihara und Miyazaki (1998)* haben gezeigt, dass durch die Kombination einer Injektion von DNA in den Muskeln mit einer Elektroperforation die Expression um das 100-fache erhöht werden kann.

Mir et al. (1999) verwendet verschiedene Arten von Elektroden, um Gene in eine Vielzahl von Arten von Skelettmuskeln (Ratten, Mäuse, Kaninchen, Affen) zu übertragen. Ihre Ergebnisse zeigten, dass durch die Verwendung von Elektroperforationen und DNA-Injektionen: (1) die Effizienz des Gentransfers erheblich erhöht wurde, nur die Expression um das 2-4-fache erhöht wurde; (2) Die Unterschiede zwischen den verschiedenen Experimenten werden verringert, was genau der Hauptnachteil der einzelnen DNA-Injektion ist; (3) Lange Ausdrucksdauer (mehrere Monate), was für langfristige klinische Anwendungen von großer Bedeutung ist; (4) verschiedene Muskeln verschiedener Gattungen haben eine positive Reaktion, die eine breite Verfügbarkeit beschreibt; (5) Die Genexpression ist sehr spezifisch, nur lokal, während das umliegende Gewebe nicht beeinflusst wird. Diese Technik wird erfolgreich in anderen Geweben wie Leber, Hoden und Haut eingesetzt.

Zui und Vicat et al. (1999) übertragen Gene wie Gehirngewebe von Mäusen über in vitro Elektropiercer. Die Elektroperforation ist 50-mal effektiver als die Methode der Kombination von pCMV-luc mit Polyethylenmine, einem nicht-viralen Träger, der als leistungsstarker Gehirngewebe-Gentransfer bekannt ist. Nishi et al. haben gezeigt, dass die Verwendung von Elektropiercing eine effektive Neurogliom-Gentransfer ermöglicht. Nishi zeigte auch, dass das Tumorvachstum nach der Elektrogentherapie eines soliden Tumors um 50-90% blockiert wurde. Dean et al. haben erfolgreich genetische Elektrizität in die gesamte Darm-Membran-Arterie eingeführt. Elektroperforation hat sich als eine vielversprechende Technik für die Durchführung von Körpergen / Drogentransfers mit vielen neuartigen Anwendungen erwiesen. Speziell entwickelte 2-Pin-Array-Elektroden von BTX Genetrodes、 Klemmenelektroden, Tweezertrodes bieten eine Methode zur Übertragung von Gen-Invasivität und Invasivität in Gewebe.

Intra-Ei-Gentransfer (IOGD) (System: ECM830)
Muramatsu et al. (1997) verglichen drei Transfektionsmethoden zur Übertragung fremder Gene in frühe Hühnerembryos zur Expression. Er fand heraus, dass Elektroperforation im Vergleich zu Liposomtransfektionen und Genpistolen eine effektive Methode ist. Takeuchi et al. (1999) verwendeten Elektropiercing-Techniken, um die frühen Hühnerembryonen mit den Genen tbx5 und tbx4 zu transfizieren, um die Flügel-/Beinmarker der Knopfe zu bestimmen.
Für diesen Zweck wurden spezielle Elektroden entwickelt. Genetroden, L-förmige Nadelelektroden, werden verwendet, um bestimmte Bereiche von Hühnerembryos und Zielgewebe zu bestimmen. Viele Forscher haben Augen, Herz oder Körpergewebe transfiziert, was weitere Entwicklungsbiologische Methoden erleichtert. Der kürzlich auf dem Markt eingeführte Fußschalter mit Fernbedienung ist der ECM830, der ohne Handbedienung aktiviert werden kann, was für den Einsatz in-Ei, in-vitro und in vitro-Embryonen von großer Bedeutung ist.

In vitro Embryogentransfer (IVEGD) (System: ECM830)
Tasaki et al. (1999) diskutiert die Anwendung von Elektropiercing in vitro Mäusenbryonen. Mäusenbryonen haben eine säulenförmige Struktur und haben mehr Anforderungen an die Bedienung von Embryonenbryonen als Geflügel. Es ist möglich, einen Embryo für die Untersuchung der Isotopische Expression zu elektropierzieren. Bei Mäusen wurde die Genexpression des Gehirns beobachtet. Diese Technik wurde auch in Mäusenbryonen nach 9,5 Tagen der Paarung verwendet, um die Funktion des Hu-Gens in der Neurodifferenziation zu untersuchen. BTX bietet für diese Zwecke eine völlig neue Elektrode an: Genepaddles.

Embryomanagement/Kerntransplantation/Tierklonung (System: ECM2001/830)
Eine Kerntransplantation ist der Prozess der Übertragung des Zellkernes vom Spender zum Rezeptor. Der Zellkern leitet die Entwicklung des Embryos und führt zu einer sicheren Geburt des Neuen. In diesem Prozess wird Elektrofusion verwendet, um Spenderzellen mit Empfängereizellen zu fusionieren und die Zellteilung weiter zu aktivieren, um Embryonen zu bilden. Meng et al. (1997) erweiterten die Kerntransplantationstechnik auf Primatenmodelle und klonten den Ganges-Affen. Der technologische Fortschritt ermöglichte es den Forschern, von der Splitball zu höher differenzierten embryonalen Zellen sowie zu stationären embryonalen Zellen als Quelle der Versorgung mit Kernen fortzuschreiben. Die Zellen, die vom Embryo erzeugt werden, werden in 6-13 Generationen in vitro kultiviert und dann mit der Methode des Serum-Hungers vor der Transformation zur Stillstand gebracht. Wie bereits erwähnt, waren Roble, Cibelli und Stice die ersten, die 1998 berichteten, dass nicht alternde embryonogene Fibrozellen als Nuklearspender für eine Nukleartransplantation verwendet wurden, um genetisch veränderte Rinder von Schafen zu klonen. 1996 schockierte Ian Wilmut die ganze Welt, als er einen Tierklon aus den Zellen einer erwachsenen Brust entwickelte: Dolly. Die Fähigkeit, mit differenzierten erwachsenen Zellen zu klonen, öffnet die Tür zu einer weit verbreiteten Anwendung der Kerntransplantation, einem spannenden Muster der Gentherapie. PPL Therapeutics hat Schweine aus erwachsenen Zellen geklont. Für diese Anwendungen können eine Vielzahl von Zellfusionsprobenpools und Mikroträger verwendet werden.
Technische Daten
Arbeitszustand: mit Einstart-Selbstprüfung
Schnittstelle: Digital User Interface
Eingangsspannung: 110VAC/220Hz
Ladezeit: Zui 5 Sekunden (keine Verzögerung)
Spannungsbereich: 5-500V Niederspannungsbetriebsmodus kontinuierlich einstellbar / 1V pro Schritt
20-3000V Hochspannungsbetriebsmodus / 5V pro Einschaltung
Auswahl der Pulsbreite: 10μs-999μs Niederdruckbetriebsmodus / 1μs Genauigkeit
1ms-999ms Hochdruckbetriebsmodus / 1ms Genauigkeit
1s-10s Niederdruckbetriebsmodus / 0,1s Genauigkeit
10μs-600μs Hochdruckbetriebsmodus / 1μs Genauigkeit
Anzahl der Impulse: 1-99
Impulsintervall: 100ms-10s
Sicherheit: Kurzschlussschutz
Sonstige Indikatoren: Kapazität: 4000μF
Stromstrom: 10μs 500A
Physikalische Parameter: Größe: 12,5' × 12,25' × 5,5' (W × D × H)
Gewicht: 15 Pfund (6,8 kg)
Anzeige: 20 x 4-Bit LCD-Display
Steuerung: Drehspannungsauswahlknopf
Druckschalter und Tischtennisschalter
Schnittstellen: RS232 und RS485
Überwachung: Überwachung der Anzeigespannung (V) Zeit (t) Anzahl der Impulse (n)